Merit Medical HepaSphere™ Microspheres - MDD Kasutusjuhend

Tüüp
Kasutusjuhend
INSTRUCTIONS FOR USE 3
MODE D’EMPLOI 12
ISTRUZIONI PER L’USO 22
GEBRAUCHSANWEISUNG 31
INSTRUCCIONES DE USO 41
INSTRUÇÕES DE UTILIZAÇÃO 50
INSTRUÇÕES DE USO 60
GEBRUIKSINSTRUCTIES 69
BRUKSANVISNINGAR 79
BRUGSANVISNING 88
ΟΔΗΓΙΕΣ ΧΡΗΣΗΣ 97
KULLANIM TALİMATLARI 107
РУКОВОДСТВО ПО ЭКСПЛУАТАЦИИ 116
INSTRUKCJA UŻYTKOWANIA 126
VOD K POUŽITÍ 135
ИНСТРУКЦИИ ЗА УПОТРЕБА 144
HASZNÁLATI UTASÍTÁS 154
KASUTUSJUHEND 163
YTTÖOHJEET 172
NAUDOJIMO INSTRUKCIJOS 181
IZMANTOŠANAS INSTRUKCIJAS 190
VOD NA POUŽITIE 199
INSTRUCȚIUNI DE UTILIZARE 208
BRUKSANVISNING 217
3
INTENDED USE
HepaSphere™ Microspheres are indicated
for use in embolization of blood vessels
with or without delivery of doxorubicin HCl
for therapeutic or preoperative
purposes in the following procedures:
Embolization of hepatocellular
carcinoma
Embolization of metastases to the liver.
HepaSphere Microspheres loaded with
irinotecan are indicated for use in:
Embolization of metastatic colorectal
cancer (mCRC) to the liver.
DESCRIPTION
HepaSphere Microspheres are part
of a family of embolic agents based
on proprietary technologies. They
are designed for controlled, targeted
embolization. The HepaSphere
Microspheres can be loaded with
doxorubicin HCl or irinotecan, and
are able to release the drug locally at
the embolization site. HepaSphere
Microspheres are biocompatible,
hydrophilic, non-resorbable, expandable,
and conformable microspheres.
HepaSphere Microspheres swell upon
exposure to aqueous solutions. They are
available in a range of sizes.
Dry(m) 20-40 30-60 50-100 100-150 150-200
DEVICE PACKAGING
HepaSphere Microspheres are contained
in a sterile, 10 ml vial, with a crimped cap,
packaged in a sealed pouch.
Contents: 25 mg or 50 mg of dry
HepaSphere Microspheres per vial to be
reconstituted before use.
CONTRAINDICATIONS
Patients intolerant to vascular occlusion
procedures
Vascular anatomy or blood ow
precluding correct catheter placement
or embolic injection
Presence or suspicion of vasospasm
Presence or likely onset of haemorrhage
Presence of severe atheromatous
disease
Presence of collateral vessel pathways
potentially endangering normal
territories during embolization
High ow arteriovenous shunts or
stulae with luminal diameter greater
than the selected size of HepaSphere
Microspheres
Vascular resistance peripheral to the
feeding arteries precluding passage
of HepaSphere Microspheres into the
lesion
Do not use in pulmonary vasculature,
coronary and central nervous system
vasculature
Known sensitivity to poly vinyl alcohol-
co-sodium acrylate
WARNINGS
HepaSphere Microspheres size
must be chosen after consideration
of the arteriovenous angiographic
appearance. HepaSphere Microspheres
size should be selected both to be
appropriate for the size of the vessel
feeding the target and to prevent
passage from artery to vein.
Some of the HepaSphere Microspheres
may be slightly outside of the range,
so the physician should be sure to
carefully select the size of HepaSphere
Microspheres according to the size of
the target vessels at the desired level of
occlusion in the vasculature and after
consideration of the arteriovenous
angiographic appearance.
Because of the signicant complications
of untargeted embolization, extreme
caution should be used for any
procedures involving the extracranial
circulation encompassing the head
and neck, and the physician should
carefully weigh the potential benets
of using embolization against the risks
and potential complications of the
procedure. These complications can
include blindness, hearing loss, loss of
smell, paralysis, and death.
Serious radiation induced skin injury
may occur to the patient due to long
periods of uoroscopic exposure,
large patient, angled x-ray projections
and multiple image recording runs
or radiographs. Refer to your facilitys
clinical protocol to ensure the proper
radiation dose is applied for each
specic type of procedure performed.
Onset of radiation injury to the patient
may be delayed. Patients should be
counselled on potential radiation
eects, what to look for and whom to
contact if symptoms occur.
INSTRUCTIONS FOR USE
English
4
HepaSphere Microspheres MUST NOT
be reconstituted in sterile water for
injection. Reconstitution in sterile
water results in extensive swelling that
renders the injection of HepaSphere
Microspheres very dicult or may
prevent injection.
Do not reconstitute HepaSphere
Microspheres with Lipiodol / Ethiodol.
Pay careful attention for signs of
untargeted embolization. During
injection carefully monitor patient vital
signs to include SaO2 (e.g. hypoxia, CNS
changes). Consider terminating the
procedure, investigating for possible
shunting, or increasing Microspheres
size if any signs of untargeted
embolization occur or patient
symptoms develop.
Consider upsizing the Microspheres if
angiographic evidence of embolization
does not quickly appear evident during
injection of the Microspheres.
Warnings about use of small
microspheres:
Careful consideration should be given
whenever use is contemplated of
embolic agents that are smaller in
diameter than the resolution capability
of your imaging equipment. The
presence of arteriovenous anastomoses,
branch vessels leading away from the
target area or emergent vessels not
evident prior to embolization can lead
to untargeted embolization and severe
complications.
Microspheres smaller than 100
microns are more likely to terminate
circulation to distal tissue. Greater
potential of ischemic injury results
from use of smaller sized microspheres
and consideration must be given
to the consequence of this injury
prior to embolization. The potential
consequences include swelling,
necrosis, paralysis, abscess and/or
stronger post-embolization syndrome.
Post embolization swelling may result
in ischemia to tissue adjacent to target
area. Care must be given to avoid
ischemia of intolerant, non targeted
tissue such as nervous tissue.
PRECAUTIONS
HepaSphere Microspheres must only be
used by physicians trained in vascular
embolization procedures. The size and
quantity of microspheres must be carefully
selected according to the lesion to be
treated and the potential presence of
shunts. Only the physician can decide the
most appropriate time to stop the injection
of HepaSphere Microspheres.
Do not use if the vial, cap, or pouch
appear damaged.
For single patient use only - Contents
supplied sterile - Never reuse, reprocess,
or resterilize the contents of a vial that has
been opened. Reusing, reprocessing or
resterilizing may compromise the structural
integrity of the device and or lead to
device failure, which in turn may result in
patient injury, illness or death. Reusing,
reprocessing or resterilizing may also
create a risk of contamination of the device
and or cause patient infection or cross
infection including, but not limited to, the
transmission of infectious disease(s) from
one patient to another. Contamination
of the device may lead to injury, illness
or death of the patient. All procedures
must be performed according to accepted
aseptic technique.
HepaSphere Microspheres MUST NOT be
used in their original dry state. They must
be reconstituted before use. HepaSphere
Microspheres swell in aqueous solution.
The magnitude of swelling depends on the
ionic concentration of the solution. The
microspheres swell to approximately four
times their diameter in 0.9% NaCl aqueous
solution and nonionic contrast media, as
compared to their initial dry diameter. The
magnitude of swelling when loaded with
doxorubicin HCl is dependent upon the
amount of drug with which the product is
loaded. Lyophilized doxorubicin HCl must
be reconstituted in NaCl 0.9 % solution.
HepaSphere Microspheres undergo
a size decrease of about 20% when
loaded with doxorubicin HCl, and 30%
when loaded with irinotecan compared
to the size in pure NaCl 0.9 % aqueous
solution. HepaSphere Microspheres are
compressible and can be injected easily
through microcatheters. However, injection
of the HepaSphere Microspheres before
they are fully expanded could result in
failure to reach the intended embolization
target and possible embolization of a larger
tissue area.
Note: Maximum recommended
concentration of doxorubicin HCl is 5mg/
ml. Concentrations of doxorubicin HCl
above 5mg/ml substantially increase the
solution viscosity and make it dicult to
5
handle with HepaSphere Microspheres.
Maximum recommended concentration of
irinotecan is 20 mg/ml.
Patients with known allergies to non-ionic
contrast media may require corticosteroids
prior to embolization. Additional
evaluations or precautions may be
necessary in managing periprocedural care
for patients with the following conditions:
Bleeding diathesis or hypercoagulative
state
Immunocompromise
Note: If loading HepaSphere Microspheres
with doxorubicin HCl or irinotecan, refer to
the appropriate drug IFU for information
concerning contraindications, warnings,
precautions, potential complications,
dosage, and patient management before
use.
POTENTIAL COMPLICATIONS
Vascular embolization is a high-risk
procedure. Complications may occur at any
time during or after the procedure, and may
include, but are not limited to, the following:
Paralysis resulting from untargeted
embolization or ischemic injury from
adjacent tissue oedema
Undesirable reux or passage of
HepaSphere Microspheres into normal
arteries adjacent to the targeted lesion
or through the lesion into other arteries
or arterial beds, such as the internal
carotid artery, pulmonary, or coronary
circulation
Pulmonary embolism due to
arteriovenous shunting
Ischemia at an undesired location,
including ischemic stroke, ischemic
infarction (including myocardial
infarction), and tissue necrosis
Capillary bed occlusion and tissue
damage
Vasospasm
Recanalisation
Blindness, hearing loss, and loss of smell
Foreign body reactions necessitating
medical intervention
Infection necessitating medical
intervention
Complications related to catheterization
(e.g. haematoma at the site of entry, clot
formation at the tip of the catheter and
subsequent dislodgement, and nerve
and/or circulatory injuries which may
result in leg injury)
Allergic reaction to medications (e.g.
analgesics)
Allergic reaction to non-ionic contrast
media or embolic material
Vessel or lesion rupture and
hemorrhage
Death
Post-embolization syndrom (such as
nausea, vomiting, pain, fever)
Additional information is found in the
Warnings section
SWELLING BEHAVIOR
HepaSphere Microspheres swell during
reconstitution with NaCl 0.9% aqueous
solution and non-ionic contrast media.
When hydrated in 100% NaCl 0.9%
aqueous solution or non-ionic contrast
medium, or 50% non-ionic contrast
and 50% NaCl 0.9% aqueous solution,
HepaSphere Microspheres swell
approximately 4 times their original dry
diameter in approximately 10 minutes.
For example, HepaSphere Microspheres
with a diameter of approximately 50-100
microns in their dry state will expand to
approximately 200-400 microns during
reconstitution as recommended below.
Because of the inherent variability of the
swelling process, some of the HepaSphere
Microspheres will be slightly outside of this
range after reconstitution, so the physician
should be sure to carefully select the size of
HepaSphere Microspheres according to the
size of the target vessels at the desired level
of occlusion in the vasculature and the
nature of the aqueous solution.
Note: To expand properly HepaSphere
Microspheres need to be exposed to
a minimum of 10 ml of solution for
doxorubicin HCl or saline and a minimum
of 5 ml for irinotecan. The magnitude of
swelling when loaded with doxorubicin
HCl is dependent upon the amount of
drug with which the product is loaded.
HepaSphere Microspheres undergo a size
decrease of about 20% when loaded with
doxorubicin HCl compared to the size
in pure NaCl 0.9% aqueous solution and
about 30 % when loaded with irinotecan.
CATHETER COMPATIBILITY
HepaSphere Microspheres can be injected
with microcatheters with the following
specications:
6
Dry (m)
Approximate
Reconstituted
Size range (m)
Catheter
Size ID(in.)
20-40 80-160 ≥0.020
30-60 120-240 ≥0.021
50-100 200-400 ≥0.021
100-150 400-600 ≥0.024
150-200 600-800 ≥0.027
INSTRUCTIONS
HepaSphere Microspheres must be
reconstituted with 100% NaCl 0.9%
aqueous solution or non-ionic contrast
medium, or 50% non-ionic contrast
medium and 50% NaCl 0.9% aqueous
solution if using without delivery of
doxorubicin HCl or irinotecan, or loaded
with doxorubicin HCl solution or irinotecan
solution before positioning the catheter.
Carefully select the size of HepaSphere
Microspheres according to the size of
the target vessels at the desired level
of occlusion in the vasculature and
thenature of the aqueous solution.
See the description of “SWELLING
BEHAVIOR”.
HepaSphere Microspheres may be
present outside the vial. Therefore,
thevial must be aseptically handled
away from the main sterile eld.
Ensure the compatibility of the
HepaSphere Microspheres with the
intended size of catheter to be used.
See the table above.
Inspect the packaging to conrm that
it is intact. Remove the vial from the
pouch. The external surface of the vial
is sterile.
To prevent coring the rubber stopper,
insert the injection needle as follows:
1. Hold the needle so that the bevel
faces upwards and position the tip
diagonally to the insertion site. Press
the tip against the centre of the
insertion site.
2. Apply a gentle force to the needle in
the opposite direction to the bevel
to ease the needle into the insertion
site until the heel section of the
needle is no longer visible. Be careful
not to scrape o the upper-facing
surface of the rubber cap with the
heel of the needle tip.
3. Continuing to apply a gentle force to
the needle in the opposite direction
to the bevel, slowly insert the needle
vertically through the rubber cap.
(3)
(1)
(2)
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
(3)
(1)
(2)
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
(3)
(1) (2)
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
DIRECTION OF FORCE
4. After preparation, carefully examine
the solution to determine if there are
any rubber impurities present. If the
solution appears contaminated, do
not use it.
HEPASPHERE MICROSPHERES CAN BE
USED WITH OR WITHOUT LOADING OF
DOXORUBICIN HCl OR IRINOTECAN.
OPTION 1: PREPARATION FOR
EMBOLIZATION WITHOUT DRUG
(BLAND)
The approximate reconstitution time when
used without loading of a drug is 10 min.
Fill a 10ml syringe with 100% NaCl 0.9%
aqueous solution or non-ionic contrast
medium (or 50% NaCl 0.9% aqueous
solution and 50% contrast). Connect
the syringe to a needle of 20 gauge
diameter or larger.
To ensure proper reconstitution of
the HepaSphere Microspheres, grasp
the vial horizontally in your ngertips
and roll the vial several times. This will
transfer the dry contents of the vial to
the sidewall.
Note: Pull back only the ip-top cap; do
not remove the crimp ring or the stopper
from the vial.
Carefully insert the needle from the
syringe through the stopper of the
vial. Continue rolling the vial in your
ngertips and inject the full amount
(10ml) of reconstitution medium into
the vial, then place the vial vertically
and carefully remove the syringe with
the needle attached.
Note: The vial is hermetically closed. If
aspiration from the syringe into the vial
does not automatically occur, then, using
caution, manually aspirate air from the
vial into the syringe prior to injecting the
reconstitution uid. Proper aspiration and/
or venting techniques, as approved by
the healthcare facility, may be used for
easier injection of reconstitution medium
into vial. If aspiration of air from the vial is
7
performed prior to reconstitution, exercise
caution not to remove the spheres from
the vial.
To ensure a homogeneous
reconstitution of the HepaSphere
Microspheres, shake the vial back and
forth so that the liquid contacts the
stopper 5-10 times.
Wait a minimum of 10 minutes to
allow the HepaSphere Microspheres to
reconstitute and expand fully.
Use a 30ml syringe and 20 gauge or
larger needle to aspirate the contents
of the vial. Rotate the vial to a vertical
position with the bottom of the vial
facing upward. Pull the needle back so
that it is submerged in the liquid but
not occluded by the stopper. Aspirate
the entire contents of the vial into the
syringe.
Note: If the air was previously aspirated
from the vial, gentle injection of air using
the syringe prior to aspirating the contents
of the vial will ensure an easier aspiration of
vial contents into the syringe. If all contents
are not withdrawn, introduce an additional
volume of air and repeat the aspiration
process. It is possible to add an additional
amount of non-ionic contrast or NaCl 0.9%
aqueous solution into the syringe in order
to get a higher dispersion of microspheres.
Note: HepaSphere Microspheres
reconstituted as described above can be
used in the presence of chemotherapeutic
agents such as cisplatin, epirubicin,
doxorubicin HCl, uorouracil, irinotecan
and mitomycin after hydration.
However for drug delivery, HepaSphere
Microspheres are only indicated for use
with doxorubicin HCl (see below Option 2)
or irinotecan (see below Option 3).
If microspheres were reconstituted
using 100% NaCl 0.9%, non-ionic
contrast medium must be added to
the syringe containing the HepaSphere
Microspheres for visualization under
uoroscopy. If non-ionic contrast
medium was used to reconstitute the
microspheres, additional non-ionic
contrast medium may be added.
OPTION 2: PREPARATION FOR
EMBOLIZATION LOADED WITH
DOXORUBICIN HCl
WARNING: Liposomal formulations of
doxorubicin HCl are not suitable for loading
into HepaSphere Microspheres.
As a general guideline the loading of
lyophilized doxorubicin HCl solubilized
in NaCl 0.9% solution into HepaSphere
Microspheres will take one hour. The
HepaSphere Microspheres should not
be used before they are fully hydrated
and expanded. Loading kinetics of pre-
solubilized doxorubicin HCI may vary,
depending on the concentration and pH of
the solution.
Choose the appropriate dose of
doxorubicin HCl to load into the
HepaSphere Microspheres.
Note: A maximum dose of doxorubicin HCl
75mg can be loaded into each vial of 25 mg
HepaSphere Microspheres. Solubilize the
desired dose of lyophilized doxorubicin HCl
in 20ml of NaCl 0.9% solution for injection.
NEVER USE PURE WATER
Note: Maximum recommended
concentration of doxorubicin HCl is 5mg/
ml. Concentrations of doxorubicin HCl
above 5mg/ml substantially increase the
solution viscosity and make it dicult to
handle with HepaSphere Microspheres.
Aspirate the 20ml of doxorubicin
HCl solution into two separate 30ml
syringes. Each 30ml syringe should
contain 10ml of doxorubicin HCl
solution.
Connect one of the 30ml syringes
containing 10ml of the doxorubicin
HCl solution to a needle of 20 gauge
diameter or larger.
To ensure proper reconstitution of
the HepaSphere Microspheres, grasp
the HepaSphere Microspheres vial
horizontally in your ngertips and roll
the vial several times. This will transfer
the dry contents of the vial to the
sidewall.
Note: Pull back only the ip-top cap;
do not remove the crimp ring or the
stopper from the vial.
Carefully insert the needle of one of
the 30ml syringes containing 10ml of
doxorubicin HCl solution through the
stopper of the vial. Continue rolling the
vial in your ngertips and inject the full
10ml of doxorubicin HCl solution into
the vial.
Place the HepaSphere Microspheres vial
vertically. Carefully remove the syringe
with the needle attached, and allow the
vial to stand for 10 minutes in order to
completely hydrate the spheres.
During the 10 minutes hydration period,
shake the HepaSphere Microspheres
8
vial several times back and forth so that
the liquid contacts the grey stopper.
Repeat this process every 2-3 minutes
to ensure a homogenous reconstitution
of the HepaSphere Microspheres.
Note: The vial is hermetically closed. If
aspiration from the syringe into the vial
does not automatically occur, then, using
caution, manually aspirate air from the
vial into the syringe prior to injecting the
reconstitution uid. Proper aspiration and/
or venting techniques, as approved by the
healthcare facility, may be used for easier
injection of reconstitution media into
the vial. If aspiration of air from the vial is
performed prior to reconstitution, exercise
caution not to remove the spheres from
the vial.
After the 10 minutes hydration period,
attach a 20 gauge or larger needle to
the second 30ml syringe containing
the remaining 10ml of doxorubicin HCl
solution and insert into the HepaSphere
Microspheres vial. Aspirate the contents
of the HepaSphere Microspheres vial
into the 30ml syringe containing the
remaining 10 ml of doxorubicin HCl
solution. Rotate the vial to a vertical
position with the bottom of the vial
facing upward. Pull the needle back so
that it is submerged in the liquid but
not occluded by the stopper. Aspirate
the entire contents of the vial into the
syringe.
Prior to removing the needle from the
HepaSphere Microspheres vial, while
holding the syringe vertically, gently
pull the plunger of the syringe down,
removing any solution that may be in
the hub of the needle.
Replace the needle with a syringe cap
and shake the syringe back and forth
to disperse the contents within the
syringe.
Wait a minimum of 60 minutes to
allow the HepaSphere Microspheres to
expand fully and load the doxorubicin
HCl. During the 60 minutes, the
syringe should be shaken every 10 – 15
minutes in order to optimize the drug
distribution into the spheres.
After 60 minutes, let the syringe stand
for the spheres to settle down and
purge all supernatant and discard it
following facility approved standards.
Add a minimum of 20ml of non-ionic
contrast medium to the 30ml syringe
containing the doxorubicin HCl loaded
HepaSphere Microspheres, however
larger volume of solution can provide
better control during embolization.
Shake the syringe 2 or 3 times and wait
5 min until solution homogeneity is
reached.
Before any injection, check the spheres
are in suspension, if not, shake the
syringe back and forth to disperse
contents within the syringe.
OPTION 3: PREPARATION FOR
EMBOLIZATION LOADED WITH
IRINOTECAN
HepaSphere Microspheres loaded with
irinotecan are only applicable to the 20-
40µ, 30-60µ and 50-100 sizes.
As a general guideline the loading of
irinotecan into HepaSphere Microspheres
will take 30 minutes. The HepaSphere
Microspheres should not be used before
they are fully hydrated and expanded.
Choose the appropriate dose of
irinotecan solution to load into
the HepaSphere Microspheres. A
maximum dose of 100 mg irinotecan
can be loaded in each vial of 25 mg
HepaSphere MicroSpheres. Irinotecan
solution is typically available in a
concentration of 20 mg/ml.
Aspirate the irinotecan into a syringe
connected to a needle of 20 gauge
diameter or larger.
To ensure proper reconstitution of
the HepaSphere Microspheres, grasp
the HepaSphere Microspheres vial
horizontally in your ngertips and roll
the vial several times. This will transfer
the dry contents of the vial to the
sidewall.
Note: Pull back only the ip-top cap; do
not remove the crimp ring or the stopper
from the vial.
Carefully insert the needle of the
syringe containing the irinotecan
solution through the stopper of the
vial. Continue rolling the vial in your
ngertips and inject the irinotecan
solution into the vial.
Place the HepaSphere Microspheres vial
vertically. Carefully remove the syringe
with the needle attached, and allow the
vial to stand for 30 minutes in order to
completely hydrate the spheres.
During those 30 minutes, shake the
HepaSphere Microspheres vial several
times back and forth so that the liquid
9
contacts the grey stopper. Repeat this
process every 2-3 minutes to ensure
a homogenous reconstitution of the
HepaSphere Microspheres.
Note: The vial is hermetically closed. If
aspiration from the syringe into the vial
does not automatically occur, then, using
caution, manually aspirate air from the
vial into the syringe prior to injecting the
reconstitution uid. Proper aspiration
and/or venting techniques, as approved
by the healthcare facility, may be used for
easier injection of reconstitution media
into the vial. If aspiration of air from the
vial is performed prior to reconstitution,
exercise caution not to remove the spheres
from the vial.
After the 30 minutes hydration and
loading period, attach a 20 gauge
or larger needle to an appropriately
sized syringe and insert it into the
HepaSphere Microspheres vial. Aspirate
the contents of the HepaSphere
Microspheres vial into the syringe.
Rotate the vial to a vertical position
with the bottom of the vial facing
upward. Pull the needle back so that
it is submerged in the liquid but not
occluded by the stopper. Aspirate the
entire contents of the vial into the
syringe.
Prior to removing the needle from the
HepaSphere Microspheres vial, while
holding the syringe vertically, gently
pull the plunger of the syringe down,
removing any solution that may be in
the hub of the needle.
Replace the needle with a syringe cap
and shake the syringe back and forth to
disperse the contents within the syringe.
Add an equal volume of non-ionic
contrast medium to the syringe
containing the irinotecan loaded
HepaSphere Microspheres immediately
before use.
Larger volume of non-ionic contrast
media can lead to irinotecan release
into the supernatant.
Shake the syringe 2 or 3 times and wait
5 min until solution homogeneity is
reached.
Before any injection, check that the
microspheres are in suspension. If not,
shake the syringe back and forth to
disperse contents within the syringe.
Do not remove the supernatant.
DELIVERY INSTRUCTIONS
Carefully evaluate the vascular network
associated with the target lesion
utilizing high resolution imaging.
Note: It is important to determine if any
arteriovenous shunts are present before
beginning embolization.
Using standard techniques, position
the delivery catheter within the target
vessel and the catheter tip as close as
possible to the embolization target.
Use an injection syringe no larger than
3ml for the delivery of doxorubicin/
irinotecan/bland loaded HepaSphere
Microspheres. Use of a 1ml injection
syringe is recommended.
Aspirate the HepaSphere Microspheres
mixture into the injection syringe.
Two methods for embolic aliquot
sequestering for injection may be used:
Option 1: Connect a 3way-stopcock to
the syringe containing the doxorubicin/
irinotecan/bland loaded HepaSphere
Microspheres to the infusion micro
catheter and use a 1ml syringe for
injection through the open port of the 3
way-stopcock.
Option 2: Serial aliquots of the
doxorubicin/irinotecan/bland loaded
HepaSphere Microspheres can be drawn
from the syringe into a 1ml injection
syringe through a 3 way-stop cock that
is not attached to the infusion catheter.
The 1ml syringe containing each aliquot
can be attached independently to the
infusion microcatheter and injected.
Shake the syringe back and forth to
maintain the homogenous suspension
of the HepaSphere Microspheres
mixture.
Under continuous uoroscopic
guidance, inject the aliquot of
HepaSphere Microspheres in a slow,
non forceful, pulsatile manner over a
time period of approximately 1 minute
per ml of microspheres solution. Always
inject under free-ow conditions and
monitor for reux.
Note: Reux of embolic spheres can induce
immediate ischemia of untargeted tissues
and vessels.
When stasis in the feeding pedicle
occurs while delivering the doxorubicin/
irinotecan/bland loaded HepaSphere
Microspheres, wait a minimum of
5 minutes then perform a selective
angiogram after the full 5 minutes wait
to verify the cessation of antegrade
ow.
If cessation of antegrade ow has not
occurred, continue infusion under
uoroscopic guidance until the desired
devascularization is obtained.
10
After the HepaSphere Microsphere
infusion is completed, remove the
catheter while maintaining gentle
aspiration to avoid dislodging any
residual HepaSphere Microspheres
that may still be in the catheter lumen.
Discard the catheter after removal and
do not reuse.
Discard any open vial or unused
HepaSphere Microspheres.
CAUTION
In the event that the catheter becomes
obstructed or signicant infusion resistance
is encountered during injection, do not
attempt to ush the catheter with excessive
pressure because reux of embolic
material may occur resulting in untargeted
embolization. Remove the catheter while
applying gentle aspiration and discard.
CONSERVATION AND STORAGE
HepaSphere Microspheres must be stored
in a dry, dark place in their original vials
and packaging. Use by the date indicated
on the labeling.
When the procedure of reconstitution
is completed, store the solution of
HepaSphere Microspheres in 2 to 8°C
conditions and use within 24 hours,
IF not used immediately. Do not store
HepaSphere Microspheres after contrast
medium has been added.
11
Size of dry
products (m)
Colour code
(label borders)
Quantity of
microspheres (mg) Reference
20-40 Gray 25
50
V 125 HS
V 150 HS
30-60 Orange 25
50
V 225 HS
V 250 HS
50-100 Yellow 25
50
V 325 HS
V 350 HS
100-150 Blue 25
50
V 525 HS
V 550 HS
150-200 Red 25
50
V 725 HS
V 750 HS
INFORMATION ON PACKAGING
Symbol Designation
Manufacturer: Name & Address
Use by date: year-month-day
LOTBatch code
Catalog number
Do not resterilize
Do not use if package is damaged
Keep away from sunlight
Keep dry
Single Use
Do not re-use
Caution: Consult accompanying documents
Non-pyrogenic
Sterilized using irradiation
EC mark logo - Notied body identication: 0459
Size of dry microspheres / Size of hydrated microspheres
All serious or life threatening adverse events or deaths associated with use of
HepaSphere Microspheres should be reported to the device manufacturer.
12
UTILISATION PREVUE
Les Microsphères HepaSphere™ sont
indiquées pour une utilisation dans
l’embolisation de vaisseaux sanguins avec
ou sans administration de chlorhydrate
de doxorubicine à des ns thérapeutiques
ou préopératoires dans les interventions
suivantes :
Embolisation du carcinome
hépatocellulaire
Embolisation de métastases hépatiques
Les Microsphères HepaSphere™ chargées
avec de l’irinotecan sont indiquées pour les
interventions suivantes :
Embolisation de cancer colorectal
métastatique (mCRC) dans le foie.
DESCRIPTION
Les Microsphères HepaSphere
appartiennent à une classe d’agents
emboliques basés sur des technologies
brevetées. Elles sont conçues pour une
embolisation contrôlée et ciblée. Les
Microsphères HepaSphere peuvent être
chargées en chlorhydrate de doxorubicine
ou en irinotecan, et sont capables de
libérer le médicament localement dans
la zone d’embolisation. Les Microsphères
HepaSphere sont biocompatibles,
hydrophiles, non résorbables, expansibles
et déformables. Les Microsphères
HepaSphere gonent quand elles sont
mises en contact avec des solutions
aqueuses. Elles sont disponibles dans
diérentes tailles.
CONDITIONNEMENT DU DISPOSITIF
Les Microsphères HepaSphere sont
contenues dans un acon de 10 mL, muni
d’une capsule sertie et placé dans un
sachet scellé.
Contenu : 25 mg ou 50 mg de Microsphères
HepaSphere déshydratées par acon, à
reconstituer avant utilisation.
CONTRE-INDICATIONS
Patients intolérants aux procédures
d’obstruction vasculaire
Anatomie vasculaire ou ux sanguin
empêchant le placement correct du
cathéter ou l’injection correcte des
emboles
Présence ou suspicion de vasospasme
Présence ou début probable d’une
hémorragie
Présence d’une maladie athéromateuse
sévère
Présence de voies vasculaires
collatérales susceptibles de
menacer des territoires sains durant
l’embolisation
Shunts artério-veineux à haut débit ou
stules avec un diamètre supérieur à la
granulométrie choisie des Microsphères
HepaSphere
Résistances vasculaires en aval des
artères nourricières excluant le passage
des Microsphères HepaSphere dans
la lésion
Utilisation contre-indiquée dans
le système vasculaire pulmonaire,
coronaire et intracérébral
Sensibilité connue au polyvinylalcool-
acrylate de sodium
AVERTISSEMENTS
La taille des Microsphères HepaSphere
doit être choisie en fonction de l’aspect
angiographique artério-veineux. La
taille des Microsphères HepaSphere doit
être sélectionnée à la fois pour s’adapter
à la taille du vaisseau alimentant la cible
et pour empêcher le passage de l’artère
à la veine.
Certaines Microsphères HepaSphere
peuvent être d’une taille légèrement
supérieure à la plage indiquée et le
médecin doit donc sélectionner avec
soin les Microsphères HepaSphere en
fonction de la taille des vaisseaux ciblés
au niveau souhaité de l’occlusion du
système vasculaire et après examen de
l’angiographie artérioveineuse.
Du fait des complications importantes
liées à une mauvaise embolisation, une
prudence extrême doit être appliquée
pour de quelconques interventions
impliquant une circulation
extracrânienne englobant la tête et le
cou, et le médecin doit sérieusement
peser les bienfaits potentiels du recours
à l’embolisation par rapport aux risques
et aux complications potentiels de la
procédure. Ces complications peuvent
comprendre la cécité, une perte
auditive, la perte de l’odorat, la paralysie
et la mort.
Le patient peut développer de
graves lésions cutanées inhérentes à
l’irradiation du fait de longues périodes
d’exposition à l’angiographie, en cas de
forte corpulence, d’incidences obliques,
MODE D'EMPLOI
French
Sec (m) 20-40 30-60 50-100 100-150 150-200
13
de séries répétées d’enregistrement
d’images ou de radiographies multiples.
Se reporter au protocole clinique de
votre établissement pour vous assurer
que la dose d’irradiation correcte est
utilisée pour chaque type de procédure
réalisée.
Lapparition de lésions par irradiation
chez le patient peut être retardée. Les
patients doivent être informés des eets
potentiels des rayons, de ce qu’il faut
rechercher et de la personne à contacter
en cas d’apparition de symptômes.
Les Microsphères HepaSphere NE
DOIVENT PAS être reconstituées avec
de l’eau stérile pour préparation
injectable. La reconstitution avec l’eau
stérile entraine un gonement excessif
rendant l’injection des Microsphères
HepaSphere très dicile, voir
impossible.
Ne pas reconstituer les Microsphères
HepaSphere avec du Lipiodol / Ethiodol.
Apporter une attention particulière
aux signes d’embolisation mal ciblée.
Durant l’injection suivre attentivement
les signes vitaux du patient tels que
le SaO2 (par exemple, l’hypoxie, les
changements du SNC). Envisager
d’arrêter la procédure, en cherchant un
shunt éventuel, ou sorienter vers une
taille de Microsphères supérieure si de
quelconques signes de mauvais ciblage
se produisent ou si le patient présente
des symptômes.
Envisager d’utiliser une taille
de Microsphères supérieure si
l’angiographie ne démontre pas
rapidement une embolisation évidente
pendant l’injection des Microsphères.
Avertissements au sujet de l’utilisation
de petites microsphères
Une attention toute particulière doit
être apportée lorsque les emboles
ont un diamètre inférieur à la capacité
de résolution de votre équipement
d’imagerie. La présence d’anastomoses
artério-veineuses, de vaisseaux ramiés
conduisant hors de la zone cible ou
de vaisseaux émergents non évidents,
peuvent conduire à une embolisation
mal ciblée et à des complications
graves.
Les microsphères d’une taille inférieure
à 100 microns sont plus susceptibles
d’interrompre la circulation vers
les tissus distaux. L’utilisation de
microsphères de taille plus petite peut
conduire à un risque plus élevé de
lésion ischémique et les conséquences
de cette lésion doivent être prises
en compte avant l’embolisation.
Les conséquences potentielles
comprennent le gonement, la
nécrose, la paralysie, un abcès et/ou un
syndrome post-embolisation plus fort.
Un gonement post embolisation
peut conduire à une ischémie du tissu
adjacent à la zone cible. Il faut prendre
soin d’éviter l’ischémie d’un tissu
intolérant, non ciblé tel que le tissu
nerveux.
PRECAUTIONS
Les Microsphères HepaSphere ne doivent
être utilisées que par des médecins formés
aux procédures d’embolisation vasculaire.
La taille et la quantité de microsphères
doivent être soigneusement choisies
selon la lésion à traiter et la présence
éventuelle de shunts. Seul le médecin peut
décider du moment le plus approprié pour
interrompre l’injection des Microsphères
HepaSphere.
Ne pas utiliser si le acon, le bouchon ou
le sachet paraissent endommagés.
Pour un usage unique – contenu fourni
stérile – Ne jamais réutiliser, retraiter ou
restériliser le contenu d’un acon qui a été
ouvert. La réutilisation, le retraitement ou
la restérilisation peuvent compromettre
l’intégrité structurelle du dispositif et/ou
provoquer une défaillance de celui-ci, ce
qui à son tour peut entrainer une lésion,
une maladie ou le décès du patient.
La réutilisation, le retraitement ou la
restérilisation risquent également de
générer une contamination du dispositif et/
ou causer une infection ou infection croisée
chez le patient, y compris notamment, la
transmission de maladie(s) infectieuse(s)
d’un patient à l’autre. La contamination du
dispositif peut entrainer une lésion, une
maladie ou le décès du patient. Toutes les
procédures doivent être réalisées selon la
technique aseptique acceptée.
Les Microsphères HepaSphere NE
DOIVENT PAS être utilisées dans
leur état sec d’origine. Elles doivent
être reconstituées avant l’emploi. Les
Microsphères HepaSphere gonent dans
une solution aqueuse. L’ampleur du
gonement dépend de la concentration
ionique de la solution. Les microsphères
gonent d’environ quatre fois leur diamètre
sec initial dans une solution aqueuse de
14
NaCl 0,9 % et les produits de contraste
non ioniques. L’ampleur du gonement
quand elles sont chargées en chlorhydrate
de doxorubicine dépend de la quantité de
médicament avec laquelle le produit est
chargé. Le chlorhydrate de doxorubicine
lyophilisé doit être reconstitué dans une
solution de NaCl à 0,9 %. Les Microsphères
HepaSphere subissent une diminution
de taille d’environ 20 % quand elles sont
chargées en chlorhydrate de doxorubicine,
et de 30 % quand elles sont chargées en
irinotecan, par rapport à leur taille dans
une solution aqueuse de NaCl 0,9 %
pure. Les Microsphères HepaSphere sont
compressibles et peuvent être injectées
facilement à travers des microcathéters.
Cependant, l’injection des Microsphères
HepaSphere avant leur expansion
complète peut les empêcher d’atteindre
la cible à emboliser et provoquer
l’embolisation d’une zone tissulaire plus
étendue.
Note : La concentration maximale
recommandée de chlorhydrate de
doxorubicine est de 5 mg/mL. Les
concentrations de chlorhydrate de
doxorubicine supérieures à 5 mg/mL
augmentent considérablement la viscosité
de la solution et rendent le maniement
des Microsphères HepaSphere dicile. La
concentration maximale recommandée
d’irinotecan est de 20mg/mL.
Les patients présentant des allergies
connues aux produits de contraste
non ioniques peuvent nécessiter une
administration de corticostéroïdes
avant l’embolisation. Des examens ou
précautions supplémentaires peuvent
s’avérer nécessaires pour les soins péri
opératoires pour les patients atteints des
aections suivantes :
Diathèse hémorragique ou état
d’hypercoagulabilité
Immunodépression
Note: si vous chargez des Microsphères
HepaSphere avec du chlorhydrate de
doxorubicine ou de l’irinotecan, consultez
la notice du médicament concerné
pour connaître les contre-indications,
les avertissements, les précautions, les
complications potentielles, la posologie et
la prise en charge du patient avant toute
utilisation.
COMPLICATIONS POTENTIELLES
Lembolisation vasculaire est une procédure
à haut risque. Des complications peuvent
survenir à tout moment pendant ou après
l’intervention et peuvent inclure, mais ne se
limitent pas à, ce qui suit :
Une paralysie résultant d’une
embolisation non ciblée ou d’une lésion
ischémique par œdème des tissus
voisins
Un reux indésirable ou le passage des
Microsphères HepaSphere dans les
artères saines voisines de la lésion visée
ou après traversée de la lésion, dans
d’autres artères ou lits artériels, tels
que la carotide interne, la circulation
pulmonaire, ou coronaire
Une embolie pulmonaire par shunt
artério-veineux
Une ischémie à un endroit non souhaité,
comprenant l’accident vasculaire
cérébral ischémique ou l’infarctus
ischémique (y compris l’infarctus du
myocarde) et la nécrose tissulaire
Une occlusion de lit capillaire et une
lésion tissulaire
Un vasospasme
Une reperméabilisation
La cécité, une perte auditive et la perte
de l’odorat
Les réactions à un corps étranger
nécessitant des soins médicaux
Une infection nécessitant des soins
médicaux
Des complications associées au
cathétérisme (par exemple, hématome au
point de ponction, formation d’un caillot
à l’extrémité du cathéter et déplacement
secondaire ou lésions nerveuses et/ou
vasculaires pouvant entrainer des troubles
au niveau des membres inférieurs)
Une réaction allergique aux médications
(par exemple, les analgésiques)
Une réaction allergique aux produits de
contraste non ioniques ou aux emboles
La rupture d’un vaisseau ou de la lésion
et hémorragie
La mort
Le syndrome de post-embolisation
(nausées, vomissements, douleur, èvre)
Informations supplémentaires
disponibles dans la section
Avertissements
COMPORTEMENT DE GONFLEMENT
Les Microsphères HepaSphere gonent
durant la reconstitution avec une solution
aqueuse de NaCl à 0,9 % et les produits
de contraste non ioniques. Quand elles
sont hydratées dans 100 % d’une solution
aqueuse de NaCl à 0,9 % ou un produit
de contraste non ionique, ou 50 % de
produit de contraste non ionique et 50 %
d’une solution aqueuse de NaCl à 0,9 %,
15
les Microsphères HepaSphere gonent
d’environ 4 fois leur diamètre sec original
en environ 10 minutes. Par exemple,
des Microsphères HepaSphere ayant un
diamètre d’environ 50-100 microns à l’état
sec goneront jusqu’à environ 200-400
microns durant la reconstitution telle
que recommandée ci-dessous. Du fait
de la variabilité inhérente du processus
de gonement, quelques Microsphères
HepaSphere se trouveront légèrement
en dehors de cette plage après la
reconstitution, de sorte que le médecin
doit s’assurer de choisir soigneusement
la taille des Microsphères HepaSphere
en fonction de la taille des vaisseaux au
niveau désiré d’occlusion dans le système
vasculaire et en fonction de la nature de
lasolution aqueuse.
Note : pour se dilater correctement, les
Microsphères HepaSphere doivent être
exposées à au moins 10 mL de solution pour
la doxorubicine HCl ou la solution saline et à
un minimum de 5 mL pour l’irinotecan.
Lampleur du gonement, quand il
y a chargement en chlorhydrate de
doxorubicine, dépend de la quantité de
médicament avec laquelle le produit est
chargé. Les Microsphères HepaSphere
subissent une diminution de taille d’environ
20 % quand elles sont chargées en
chlorhydrate de doxorubicine par rapport
à leur taille dans une solution aqueuse de
NaCl à 0,9 % pure et d’environ 30% quand
elles sont chargées en irinotecan.
COMPATIBILITE AVEC LE CATHETER
Les Microsphères HepaSphere peuvent être
injectées avec des microcathéters ayant les
spécications suivantes:
Sec
(m)
Plage
approximative
de tailles après
reconstitution
(m)
Diamètre
intérieur
du cathéter
(po.)
20-40 80-160 ≥0,020
30-60 120-240 ≥0,021
50-100 200-400 ≥0,021
100-150 400-600 ≥0,024
150-200 600-800 ≥0,027
INSTRUCTIONS
Les Microsphères HepaSphere doivent
être reconstituées avec 100 % d’une
solution de NaCl à 0,9 % ou d’un produit
de contraste non ionique, ou avec 50 % de
produit de contraste non ionique et 50 %
d’une solution aqueuse de NaCl à 0,9 %, en
l’absence d’administration de chlorhydrate
de doxorubicine ou d’irinotecan, ou chargées
avec une solution de chlorhydrate de
doxorubicine ou une solution d’irinotecan
avant le positionnement du cathéter.
Choisir soigneusement la taille des
Microsphères HepaSphere en fonction
de la taille des vaisseaux au niveau
désiré de l’occlusion dans le système
vasculaire et en fonction de la nature de
la solution aqueuse. Voir la description
« COMPORTEMENT DE GONFLEMENT ».
Des Microsphères HepaSphere peuvent
se trouver à l’extérieur du acon. Aussi,
le acon doit être manié de manière
aseptique à l’écart du champ stérile
principal.
S’assurer de la compatibilité des
Microsphères HepaSphere avec le
diamètre du cathéter à utiliser. Voir le
tableau ci-dessus.
Inspecter l’emballage pour conrmer
son intégrité. Retirer le acon du sachet.
La surface externe du acon est stérile.
Pour éviter de creuser le bouchon en
caoutchouc, insérez l’aiguille d’injection
de la manière suivante :
1. Tenez l’aiguille de façon à ce que
le bord coupant soit tourné vers le
haut, et placez son extrémité à la
diagonale de la zone d’insertion.
Poussez sur le centre de la zone
d’insertion avec l’extrémité de
l’aiguille.
2. Appliquez une légère pression sur
l’aiguille dans la direction opposée
au bord coupant pour l’insérer dans
la zone d’insertion, jusqu’à ce que
le talon ne soit plus visible. Assurez-
vous de ne pas racler la surface
externe du bouchon en caoutchouc
avec le talon de l’extrémité de
l’aiguille.
3. Continuez d’appliquer une légère
pression sur la seringue dans la
direction opposée au bord coupant,
et insérez lentement l’aiguille à la
verticale, à travers le bouchon en
caoutchouc.
(3)
(1)
(2)
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
(3)
(1)
(2)
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
(3)
(1) (2)
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
DIRECTION DE LA FORCE
16
4. Après la préparation, examinez
avec attention la solution pour
vérier la présence d’impuretés
en caoutchouc. Si la solution vous
semble contaminée, ne l’utilisez pas.
LES MICROSPHERES HEPASPHERE
PEUVENT ETRE UTILISEES AVEC OU SANS
CHARGEMENT EN CHLORHYDRATE DE
DOXORUBICINE OU EN IRINOTECAN
OPTION 1 : PREPARATION POUR UNE
EMBOLISATION SANS MEDICAMENT
(VIDE)
Le temps de reconstitution approximatif
quand elles sont utilisées sans chargement
d’un médicament est de 10 minutes.
Remplir une seringue de 10 mL avec 100
% d’une solution aqueuse de NaCl à 0,9 %
ou un produit de contraste non ionique
(ou 50 % de solution aqueuse de NaCl à
0,9 % et 50 % de produit de contraste).
Connecter la seringue à une aiguille de
calibre égal ou supérieur à 20 G.
Pour s’assurer de la reconstitution correcte
des Microsphères HepaSphere tenir le
acon horizontalement du bout des
doigts et faites rouler le acon plusieurs
fois. Cela fera déposer le contenu sec du
acon contre la paroi.
Note: Soulever uniquement la capsule
du acon, sans retirer la bague métallique
sertie ni le bouchon.
Introduire soigneusement l’aiguille
montée sur la seringue à travers le
bouchon du acon. Continuer à faire
rouler le acon du bout des doigts
et injecter le volume total (10 mL) du
produit de reconstitution dans le acon,
puis positionner le acon à la verticale
et retirer soigneusement l’ensemble
seringue / aiguille.
Note: Le acon est hermétiquement
fermé. Si l’aspiration depuis la seringue
dans le acon ne se produit pas
automatiquement, alors, avec précaution,
aspirez manuellement l’air du acon dans
la seringue avant d’injecter le liquide de
reconstitution. Des techniques d’aspiration
et/ou de décompression appropriées,
telles qu’approuvées par l’établissement
de santé, peuvent être utilisées pour
une injection plus facile du produit de
reconstitution dans le acon. Si de l’air est
aspiré du acon avant la reconstitution,
veiller à ne pas faire sortir les microsphères
du acon.
Pour vous assurer d’une reconstitution
homogène des Microsphères
HepaSphere, agiter le acon par va et
vient de sorte que le liquide entre en
contact avec le bouchon 5 à 10 fois.
Attendre un minimum de 10 minutes
pour laisser les Microsphères
HepaSphere se reconstituer et goner
complètement.
Utiliser une seringue de 30 mL et une
aiguille de calibre égal ou supérieur à
20 G pour aspirer le contenu du acon.
Positionner le acon à la verticale, le
fond du acon vers le haut. Retirer
l’aiguille vers l’arrière de sorte quelle
soit submergée dans le liquide mais
pas obturée par le bouchon. Aspirer
le contenu total du acon dans la
seringue.
Note : Si de l‘air a été précédemment
aspiré du acon, une injection douce
d’air en utilisant la seringue avant
l’aspiration du contenu du acon assurera
une aspiration plus facile du contenu
du acon dans la seringue. Si tout le
contenu nest pas prélevé, introduire un
volume supplémentaire d’air et répéter
le processus d’aspiration. Il est possible
d’ajouter une quantité supplémentaire de
produit de contraste non ionique ou de
solution aqueuse de NaCl à 0,9 % dans la
seringue pour obtenir une dispersion plus
importante des microsphères.
Note : Les Microsphères HepaSphere
reconstituées comme décrit ci-dessus
peuvent être utilisées en présence
d’agents chimiothérapeutiques tels que le
cisplatine, l’épirubicine, le chlorhydrate de
doxorubicine, le uororacile, l’irinotecan
et la mitomycine après hydratation.
Cependant pour l’administration
des médicaments, les Microsphères
HepaSphere ne sont indiquées que pour
une utilisation avec le chlorhydrate de
doxorubicine (voir ci-dessous l’option 2) ou
l’irinotecan (voir ci-dessous l’option 3).
Si les microsphères ont été
reconstituées à l’aide d’une solution
aqueuse de 100 % de NaCl à 0,9 %, un
produit de contraste non ionique doit
être ajouté dans la seringue contenant
les Microsphères HepaSphere
pour permettre la visualisation
angiographique. Si un produit de
contraste non ionique a été utilisé
pour reconstituer les microsphères, il
est possible de rajouter du produit de
contraste non ionique.
OPTION 2: PREPARATION POUR
UNE EMBOLISATION CHARGEE EN
CHLORHYDRATE DE DOXORUBICINE
17
AVERTISSEMENT : les formulations
liposomiques de chlorhydrate de
doxorubicine ne sont pas adaptées
au chargement dans les Microsphères
HepaSphere.
A titre d’indication, le chargement du
chlorhydrate de doxorubicine lyophilisé,
solubilisé dans une solution de NaCl à 0,9
% dans des Microsphères HepaSphere,
prendra une heure. Les Microsphères
HepaSphere ne doivent pas être utilisées
avant d’être complètement hydratées et
gonées. La cinétique de chargement
du chlorhydrate de doxorubicine pré-
solubilisé peut varier selon la concentration
et le pH de la solution.
Choisir la dose appropriée de
chlorhydrate de doxorubicine à charger
dans les Microsphères HepaSphere.
Note: Une dose maximale de 75 mg de
chlorhydrate de doxorubicine peut être
chargée dans chaque acon de 25 mg
de Microsphères HepaSphere. Solubiliser
la dose souhaitée de chlorhydrate de
doxorubicine lyophilisé dans 20 mL de
solution de NaCl à 0,9 % pour injection.
NE JAMAIS UTILISER D’EAU PURE.
Note: La concentration maximale
recommandée de chlorhydrate de
doxorubicine est de 5 mg/mL. Des
concentrations de chlorhydrate de
doxorubicine supérieures à 5 mg/mL
augmentent considérablement la viscosité
de la solution et la rendent dicile à
manier avec les Microsphères HepaSphere.
Aspirer les 20 mL de solution de
chlorhydrate de doxorubicine dans
deux seringues de 30 mL distinctes.
Chaque seringue de 30 mL doit
donc contenir 10 mL de solution de
chlorhydrate de doxorubicine.
Connecter une des seringues de 30
mL contenant 10 mL de la solution de
chlorhydrate de doxorubicine à une
aiguille de calibre égal ou supérieur
à 20 G.
Pour s’assurer de la reconstitution
correcte des Microsphères HepaSphere
tenir le acon horizontalement du
bout des doigts et faire rouler le acon
plusieurs fois. Cela fera déposer le
contenu sec du acon contre la paroi.
Note: Soulever uniquement la
capsule du acon, sans retirer la bague
métallique sertie ni le bouchon.
Introduire soigneusement l’aiguille
d’une des seringues de 30 mL
contenant 10 mL de solution de
chlorhydrate de doxorubicine à travers
le bouchon du acon. Continuer à faire
rouler le acon du bout des doigts et
injecter la solution complète de 10
mL de solution de chlorhydrate de
doxorubicine dans le acon.
Positionner le acon de Microsphères
HepaSphere à la verticale. Retirer
soigneusement la seringue avec
l’aiguille attachée, et laisser le
acon reposer durant 10 minutes
pour hydrater complètement les
microsphères.
Durant la période d’hydratation de
10 minutes, secouer doucement le
acon de Microsphères HepaSphere
plusieurs fois par va et vient de sorte
que le liquide entre en contact avec
le bouchon gris. Répéter le processus
toutes les 2 à 3 minutes pour assurer
une reconstitution homogène des
Microsphères HepaSphere.
Note: Le acon est hermétiquement
fermé. Si l’aspiration depuis la seringue
dans le acon ne se produit pas
automatiquement, alors, avec précaution,
aspirez manuellement l’air du acon dans
la seringue avant d’injecter le liquide de
reconstitution. Des techniques d’aspiration
et/ou de décompression appropriées,
telles qu’approuvées par l’établissement
de santé, peuvent être utilisées pour
une injection plus facile du produit de
reconstitution dans le acon. Si de l’air est
aspiré du acon avant la reconstitution,
veiller à ne pas faire sortir les microsphères
du acon.
Après la période d’hydratation de 10
minutes, connecter une aiguille de
calibre égal ou supérieur à 20 G à la
seconde seringue de 30 mL contenant
les 10 mL restants de la solution de
chlorhydrate de doxorubicine et les
insérer dans le acon des Microsphères
HepaSphere. Aspirer le contenu du
acon de Microsphères HepaSphere
dans la seringue de 30 mL contenant
les 10 mL restants de la solution
de chlorhydrate de doxorubicine.
Positionner le acon à la verticale, le
fond du acon vers le haut. Retirer
l’aiguille vers l’arrière de sorte quelle
soit submergée dans le liquide mais
pas obturée par le bouchon. Aspirer
le contenu total du acon dans la
seringue.
Avant de retirer l’aiguille du acon des
Microsphères HepaSphere, tout en
maintenant la seringue à la verticale,
18
tirer doucement sur le piston de la
seringue vers le bas, pour faire sortir
la solution qui peut se trouver dans le
corps de l’aiguille.
Remplacer l’aiguille par un bouchon de
seringue et agiter la seringue par va et
vient pour disperser le contenu dans la
seringue.
Attendre un minimum de 60 minutes
pour permettre aux Microsphères
HepaSphere de goner complètement
et se charger en chlorhydrate de
doxorubicine. Pendant ces 60 minutes,
la seringue doit être agitée toutes les
10 à 15 minutes an d’optimiser la
répartition du produit dans les sphères.
Après 60 minutes, laisser la seringue
reposer pour permettre aux
microsphères de sédimenter puis retirer
tout le surnageant et le jeter selon
les procédures en vigueur dans votre
établissement.
Ajouter au moins 20 mL de produit de
contraste non ionique dans la seringue
de 30 mL contenant les Microsphères
HepaSphere chargées en chlorhydrate
de doxorubicine; néanmoins, un volume
supérieur de solution peut permettre
de mieux contrôler l’embolisation.
Agiter la seringue 2 ou 3 fois et attendre
5 minutes jusqu’à ce que la solution
devienne homogène.
Avant une injection, vérier que les
sphères sont en suspension. Si tel nest
pas le cas, agiter la seringue par va et
vient pour disperser le contenu dans la
seringue.
OPTION 3: PREPARATION POUR
UNE EMBOLISATION CHARGEE EN
IRINOTECAN
Les microsphères HepaSphere chargées
d'irinotécan ne s'appliquent qu'aux sphères
dont les tailles vont de 20 à 40 µ, 30 à 60 µ
et de 50à100 µ.
D'une manière générale, le chargement
de l'irinotécan dans les microsphères
HepaSphere dure 30 minutes. Les
microsphères HepaSphere ne doivent
pas être utilisées avant d'avoir été
complètement hydratées et dilatées.
Choisissez la dose appropriée
d'irinotécan à charger dans les
microsphères HepaSphere. Une dose
maximale de 100 mg d'irinotécan peut
être chargée dans chaque acon de
25mg de microsphères HepaSphere. La
solution d'irinotécan est généralement
disponible à une concentration de
20mg/ml.
Aspirez l'irinotécan dans une seringue
raccordée à une aiguille de 20 Gauges
de diamètre ou plus.
Pour assurer la reconstitution correcte
des microsphères HepaSphere, saisissez
le acon à l'horizontale entre vos doigts
et faites rouler le acon plusieurs fois.
Cela transférera le contenu sec du
acon contre sa paroi latérale.
Note: tirez seulement la capsule à clapet;
ne retirez pas la bague sertie ni le bouchon
du acon.
Insérez soigneusement l'aiguille de
la seringue contenant la solution
d'irinotécan à travers le bouchon du
acon. Continuez à faire tourner le
acon entre vos doigts et injectez la
solution d'irinotécan dans le acon.
Placez le acon de microsphères
HepaSphere en position verticale.
Retirez soigneusement la seringue avec
l'aiguille attachée et laissez reposer
le acon pendant 30 minutes an
d'hydrater complètement les sphères.
Au cours de ces 30 minutes, agitez
plusieurs fois le acon de microsphères
HepaSphere d'avant en arrière an
que le liquide soit au contact de la
capsule grise. Répétez cette opération
toutes les 2 à 3 minutes an d'assurer
une reconstitution homogène des
microsphères HepaSphere.
Note: le acon est hermétiquement fermé.
Si l'aspiration depuis la seringue dans le
acon ne se produit pas automatiquement,
aspirez manuellement l'air du acon dans
la seringue avant d'injecter le liquide de
reconstitution. Des techniques appropriées
d'aspiration et/ou d'aération, telles
qu'approuvées par l'établissement de
santé, peuvent être utilisées pour faciliter
l'injection du milieu de reconstitution
dans le acon. Si l'aspiration d'air depuis le
acon est eectuée avant la reconstitution,
veillez à ne pas faire sortir les sphères du
acon.
Au terme de la période d'hydratation et
de chargement de 30minutes, xez une
aiguille de 20 Gauges ou plus sur une
seringue de taille appropriée et insérez-
la dans le acon de microsphères
HepaSphere. Aspirez le contenu des
microsphères HepaSphere dans la
seringue. Faites pivoter le acon jusqu'à
une position verticale, le fond du acon
étant tourné vers le haut. Tirez l'aiguille
en arrière an qu'elle soit immergée
dans le liquide, sans être obstruée par le
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bouchon. Aspirez la totalité du contenu
du acon dans la seringue.
Avant de retirer l'aiguille du acon
de microsphères HepaSphere, en
tenant la seringue verticalement, tirez
doucement le piston de la seringue
vers le bas an de retirer toute solution
qui pourrait se trouver dans l'embase
del'aiguille.
Remplacez l'aiguille par un bouchon
de seringue et agitez plusieurs fois la
seringue par va et vient an de
disperser le contenu dans la seringue.
Immédiatement avant utilisation,
ajoutez un volume égal de milieu
de contraste non-ionisé dans la
seringue contenant les microsphères
HepaSphere chargées d'irinotécan.
Un volume plus important de milieu
de contraste pourrait provoquer
la libération d'irinotécan dans
lesurnageant.
Agitez la seringue par va et vient 2 ou
3 fois et attendez 5minutes an que la
solution soit bien homogène.
Avant toute injection, vériez que les
microsphères sont en suspension. Si
ce n'est pas le cas, agitez la seringue
plusieurs fois par va et vient an de
disperser le contenu dans la seringue.
Ne retirez pas le surnageant.
INSTRUCTIONS D’ADMINISTRATION
Evaluer soigneusement le réseau
vasculaire associé à la lésion ciblée
en utilisant une imagerie à haute
résolution.
Note: Il est important de déterminer si des
shunts artérioveineux sont présents avant
de commencer l’embolisation.
En utilisant les techniques standard,
positionner le cathéter d’administration
dans le vaisseau ciblé et l’extrémité du
cathéter aussi proche que possible de la
cible d’embolisation.
Utiliser une seringue d’injection de
3 mL au plus pour l’administration
des Microsphères HepaSphere non
chargées ou chargées en doxorubicine/
irinotecan. L’utilisation d’une seringue
d’injection de 1 mL est recommandée.
Aspirer le mélange de Microsphères
HepaSphere dans la seringue
d’injection.
Deux méthodes peuvent être utilisées
pour prélever une aliquote d’embole
pour l’injection :
− Option 1 : connecter un robinet
d’arrêt à trois voies à la seringue de
30 mL contenant les Microsphères
HepaSphere non chargées ou chargées
en doxorubicine/irinotecan et au
microcathéter d’injection, puis utiliser
une seringue de 1 mL pour une
injection à travers la voie ouverte du
robinet d’arrêt à 3 voies.
− Option 2 : une série d’aliquotes
des Microsphères HepaSphere non
chargées ou chargées en doxorubicine/
irinotecan peut être préparée à partir
de la seringue de 30 mL vers des
seringues d’injection de 1 mL à travers
un robinet d’arrêt à trois voies qui n’est
pas connecté au cathéter d’injection.
La seringue de 1 mL contenant
chaque aliquote peut être connectée
indépendamment au microcahéter
d’injection et injectée.
Agitez la seringue par va et vient pour
maintenir la suspension homogène du
mélange de Microsphères HepaSphere.
Sous contrôle angiographique continu,
injecter l’aliquote de Microsphères
HepaSphere de manière lente, pulsatile,
sans forcer, à une vitesse d’environ
1 mL par minute de solution de
microsphères. Toujours injecter dans
des conditions d’écoulement libre et
surveiller un reux.
Note: Le reux des microsphères
d’embolisation peut induire une ischémie
immédiate de tissus et de vaisseaux non
ciblés.
Quand une stase se produit dans
le pédicule nourricier au cours de
l’administration des Microsphères
HepaSphere non chargées ou chargées
en chlorhydrate de doxorubicine /
irinotecan, attendre un minimum de 5
minutes puis réaliser un angiogramme
sélectif pour vérier l’interruption du
ux.
Si l’interruption du ux ne s’est pas
produite, continuer l’injection sous
contrôle angiographique jusqu’à ce
que la dévascularisation souhaitée soit
obtenue.
Dès que l’injection des Microsphères
HepaSphere est terminée, retirer le
cathéter en maintenant une aspiration
douce pour éviter de détacher des
Microsphères HepaSphere résiduelles
susceptibles de se trouver dans la
lumière du cathéter. Jeter le cathéter
après son retrait et ne pas réutiliser.
Jeter tout acon ouvert ou toutes
Microsphères HepaSphere non utilisées.
20
MISE EN GARDE
Si le cathéter s’obstrue ou que l’on
rencontre une résistance importante lors
de l’injection, ne pas essayer de rincer
le cathéter en exerçant une pression
excessive car un reux des emboles peut
se produire, conduisant à une embolisation
non ciblée. Enlever le cathéter tout en
appliquant une aspiration modérée et jeter.
CONSERVATION ET STOCKAGE
Les Microsphères HepaSphere doivent être
stockées dans un endroit sec, à l’abri de
la lumière dans leurs conditionnements
d’origine. Utiliser avant la date limite
indiquée sur l’étiquetage.
Quand la procédure de reconstitution
est terminée, stocker la solution de
Microsphères HepaSphere entre 2 °C et 8
°C et utiliser dans les 24 heures, SI elle nest
pas utilisée immédiatement. Ne pas stocker
les Microsphères HepaSphere après l’ajout
du produit de contraste.
Date de premier marquage CE: 2004
Taille des
produits
secs (m)
Code couleur
(bordures des
étiquettes)
Quantité de
microsphères (mg) Référence
20-40 Gris 25
50
V 125 HS
V 150 HS
30-60 Orange 25
50
V 225 HS
V 250 HS
50-100 Jaune 25
50
V 325 HS
V 350 HS
100-150 Bleu 25
50
V 525 HS
V 550 HS
150-200 Rouge 25
50
V 725 HS
V 750 HS
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Merit Medical HepaSphere™ Microspheres - MDD Kasutusjuhend

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